1.拥有生物学实验室和PCR实验室
2.已开展循环肿瘤细胞(CTC)的项目
3.拥有经验丰富、操作熟练、具有上岗资格证的技术人员
1不同分期肺癌患者CTC和cfDNA两种检测方法评估治疗疗效的预测模型建立; 2建立标准化的检测流程和结果判读标准。
通过CTC和cfDNA检测,评估两种检测方法单独和联合监控肺癌治疗的价值:
1) 阐明CTC和cfDNA检测与肺癌治疗疗效的相关性,建立预测模型;
2) 发表SCI论文1-2篇。后续成果作为前期基础继续申报课题。
细胞游离DNA片段(cfDNA)检测是近年来新兴的、发展较快的一种“液体活检”技术。研究发现,癌症患者血浆和血清中cfDNA异常增高[1],提示cfDNA与肿瘤具有相关性,并有可能成为评价预后和监测疗效的生物标志物[2]。至今,已在结直肠癌、胰腺癌、肺癌等多种肿瘤中,发现cfDNA具有特征性基因改变,包括点突变、微卫星不稳定、DNA超甲基化、杂合子缺失等[3]。多项研究表明,cfDNA的基因改变与原发肿瘤及循环肿瘤细胞(CTC)基因改变具有高度一致性[4, 5]。CTC或循环肿瘤细胞DNA(ctDNA)可作为肿瘤诊断、治疗和预后评估的新型生物标志物[6],但在患者外周血中含量较低,不易提取和鉴定,由于其操作复杂,成本较高,且监测周期长,限制了其在临床中的实际应用[7]。有前期数据表明,cfDNA与ctDNA含量具有很强的正相关性[8]。因此,我们可以通过检测cfDNA的水平来间接监测肿瘤对治疗的反应。另外,正常组织或细胞在经受照射后也会发生凋亡或坏死,短时间内释放大量cfDNA,其变化量可提示放射损伤风险[9]。
如何高灵敏度,准确快速、便捷高效地检测血液中cfDNA含量变化是发展这一“液体活检技术”临床应用的关键,我们的合作研究单位开发出了一套核酸信号放大技术(SuperbDNATM),通过检测血中游离的Alu序列含量来间接反映cfDNA的总体水平。Alu序列是一段大量表达的重复序列,约占基因组的10%[10],并在全血中稳定存在[11],其表达与总cfDNA的水平具有很强的相关性[12]。
此技术平台用于量化cfDNA的敏感性达91.7%,特异性为88.6%[13, 14],获得了美国全球专利(专利号US 2012/0003625 A1)。此技术平台特点是使用经过修饰的Branched DNA(bDNA)分子和新的探针组设计,提高靶DNA序列上的标记化学信号扩增,而不需扩增靶序列本身(如图1所示)。工作原理如下:每个寡核苷酸探针组含有两种类型的合成探针,即捕获延伸探针(CEs)和标记延伸探针(LEs)。CEs和LEs 都可以跟靶DNA序列结合。首先, MagPlex™ Microspheres(磁珠)偶联的捕获探针通过CEs-捕获探针以及CEs-靶DNA之间的共同杂交,捕获靶DNA序列。然后,LEs能够同时与靶DNA和预扩增探针结合。1个预扩增探针含有20个与扩增探针结合的位点,1个扩增探针也含有20个与标记探针结合的位点。因此,靶信号最终被放大400倍。最后,生物素标记探针与藻红蛋白标记的链霉亲和素(SAPE)结合,通过Luminex仪器如MAGPIX测出磁珠上的荧光强度。荧光强度与样品中存在的DNA分子数量成正比,即可推算出样品中cfDNA的水平。此方法实现了对血浆样本中cfDNA浓度的高灵敏定量检测,优点包括无需提取,无需扩增,易操作,检测周期短,适于临床检测需求。Canales等学者通过对比发现,SuperbDNATM比PCR在检测244个常见基因时显示出一定优势,如偏差更小;省去DNA提取丢失及扩增带来的误差影响;避免样品交叉污染;易于实现自动化及批量检测[15]。这一技术为我们在肿瘤治疗过程中监测cfDNA变化提供了必要的技术支持。